Micropropagação de Aspidosperma polyneuron (peroba-rosa) a partir de segmentos nodais de mudas juvenis Translated title: Micropropagation of Aspidosperma polyneuron from single node culture of juvenile material

Abstract

O presente trabalho teve como objetivo o estabelecimento de um protocolo de regeneração in vitro de mudas de Aspidosperma polyneuron (peroba-rosa), a partir de segmentos nodais de material juvenil. Brotações apicais de mudas de dois anos de idade foram desinfestadas com 0,25% de hipoclorito de sódio ou 0,05% de cloreto de mercúrio, durante 10 min, visando ao estabelecimento de culturas assépticas. A indução de brotações múltiplas foi realizada em meio de cultura WPM, suplementado com BAP, ZEA ou CIN (2,2-8,8 miM), no cultivo inicial e nos dois subcultivos subseqüentes. Para indução de brotações alongadas foram testadas as combinações de fitorreguladores: 2,25 miM de BAP, ZEA ou CIN, associadas com 1,25 miM de AIB. A indução de raízes foi avaliada com tratamentos em soluções de AIB (2,5-10 mM), durante 5 ou 15 min. As mudas enraizadas foram transplantadas para casa de vegetação. A desinfestação das brotações apicais foi eficiente com 0,25% de NaOCl ou 0,05% de HgCl2, durante 10 min, obtendo-se 72,89 e 84,10% de sobrevivência, respectivamente. As maiores taxas médias de regeneração de brotações axilares (4 a 5) foram obtidas em meio de cultura suplementado com ZEA ou BAP (4,4-8,8 miM), após o segundo subcultivo. Concentrações mais reduzidas de BAP ou ZEA (2,25 miM) e 1,25 miM de AIB proporcionaram, em média, três brotações mais alongadas (1,5-2,5 cm de comprimento). Tratamentos com soluções de 10 mM de AIB, durante 15 min, foram eficientes na indução de raízes (80%), e as mudas transplantadas apresentaram taxas de sobrevivência superiores a 90% em casa de vegetação.

Translated abstract

The objective of the present work was to establish a micropropagation protocol of Aspidosperma polyneuron from juvenile material. Apical shoots from two years old seedlings were collected in a greenhouse and sterilised with NaOCl or HgCl2 to establish aseptic cultures. Multiple shoots induction was evaluated in WPM medium, supplemented with BAP, ZEA or KIN (2.2 - 8.8 muM) in initial culture and two subsequent subcultures. The elongation of shoots was tested with growth regulators combinations: 2.25 muM of BAP, ZEA or KIN with 1.25 muM of IBA. IBA treatments (2.5; 5.0 and 10 mM) were tested with 5 and 15 minutes to induce roots. Plantlets were planted in a greenhouse. Efficient apical shoots sterilization was achieved with NaOCl (0,25% - 10 minutes) or HgCl2 (0.05%-10 minutes); survival rates were 72.89% and 84,10%, respectively. Apical shoots induced 4-5 axillary buds in WPM culture medium, containing ZEA or BAP (4.4 - 8.8 muM) following two subcultures. Reduced concentrations of ZEA or BAP (2.25 muM), combined with IBA (1.25) produced elongated shoots. IBA treatment (10 mM) during 15 minutes induced higher rooting percentages (80%). Plantlets planted in a greenhouse showed higher survival rates (90%).